细胞加药物有时候也是让人头疼，稍一过量，不过数小时细胞便失去活力；而剂量不足，则难以构建出理想的实验模型。药物的有效性及安全性与其在细胞内的浓度紧密相连。所以，精通细胞内药物浓度的计算方法，对于药物研究而言极为关键。
细胞给药计算公式
细胞内药物浓度计算：细胞内药物浓度 = 给药浓度 × 细胞摄入率 × 细胞量 / 细胞体积
细胞给药具体步骤
一、药物配制：
固体药物配制：
公式：药物质量(mg) = 目标浓度(mM) × 溶剂体积(L) × 药物分子量（注意药物的最小及最高溶解浓度）
浓度转换原则：mM转mg/mL：摩尔浓度 × 分子量 / 1000
mg/mL转mM：质量浓度 / 分子量 × 1000
液体药物配制：
公式：起始浓度 × 起始体积 = 最终浓度 × 最终体积
二、药物溶剂选择：
纯ddH2O：适用于水溶性药物。
万能溶剂DMSO：适用于不溶于水的药物。
其他溶剂：如四氢呋喃、丙酮、乙酸乙酯等。
注意：溶解药物前需查阅说明书，某些药物需特殊试剂溶解。确定药物的亲水或亲脂性；常用溶剂有水、醇、DMSO、丙酮，其中DMSO溶解的药物需稀释1000倍以消除溶剂毒性。以最大溶解浓度稀释1000倍为最高浓度，逐步稀释。若药物有抑制作用，采用改良寇氏法计算IC50值，初步确定给药的最大和最小剂量。
三)、确定适宜给药浓度：
首先，通过查阅文献来确定给药浓度，具体搜索方式为“药物名称+细胞系名称”。若未找到相关文献，可尝试查找该药物在其他细胞系中的应用。随后，设计并执行两次预实验：第一次采用较宽的浓度范围（可制备两个母液），第二次根据第一次的结果缩小范围，但避免过于狭窄。
对于每个药物浓度梯度，设置6-10个孔（含0浓度对照）。浓度梯度一般设置为等比数列，如2的倍数：0、0.1、0.2、0.4、0.8、1.6等。根据选定的倍数，配制不同浓度的药物母液备用。
四、向培养板添加药物：
对于悬浮细胞，先进行离心处理；贴壁细胞则可直接吸去旧培养基，注意避免吸到细胞。
贴壁细胞需用PBS溶液清洗，盖板后呈“8”字形晃动，然后吸去PBS（确保吸净，防止残留）；悬浮细胞可跳过此步骤。
设置纯空白组（无细胞，仅加培养基）、对照组（有细胞，加培养基但不加药），其余8孔按实验设计加入不同浓度的药物及培养基（建议每个浓度重复6孔）。
加药完成后，立即将细胞放回培养箱中。
细胞加药关键注意事项
1. 药物与溶剂准备：确保药物纯度和质量，使用精确称量设备按实验需求准确称取药物。
2. 溶剂选择：依据药物溶解性和细胞培养条件，选用合适溶剂。常用溶剂包括水、醇、DMSO、丙酮等。DMSO溶解的药物需稀释1000倍以消除溶剂毒性。
3. 药物溶解：采用搅拌、振荡或超声方法促进药物在溶剂中的完全溶解。
4. 浓度调整：根据实验需求，将溶解后的药物稀释至所需浓度。
5. 除菌处理：使用适当过滤器对药物溶液进行除菌。
6. 药物储存：根据药物稳定性，选择合适的储存条件进行保存。
7. 浓度检测：必要时进行药物浓度测定，确保实验准确性。
在药物配制过程中，需特别注意：
严格无菌操作，防止污染。
准确称量，保证浓度精确。
考虑药物的溶解性和稳定性，合理选择溶剂和储存方式。
严格按照实验设计进行配制和使用。