构建动物模型法
这是动物实验的基础手段，通过人为施加机械、化学、生物或物理等致病因素，诱导动物产生类似人类的疾病状态，从而模拟疾病过程，探究其发病机制、发展规律及治疗策略。
PART 2解剖与分离技术
该技术常用于活体动物的整体实验中，通常在麻醉状态下进行，包括活体解剖、器官或组织的分离暴露，以及实施特定手术准备等，被称为“急性动物实验”。
优势在于操作简便、实验条件易于控制，并能直接观察目标器官。但是，麻醉、手术创伤及实验动物存活时间有限等因素可能对实验结果产生影响。因此，操作时需确保麻醉适度、手术精细以减少出血和创伤，并熟悉手术区域的神经血管分布。
PART 3切除与注射提取液法
该方法广泛应用于内分泌系统生理与病理研究，例如，通过切除特定腺体观察辐射或其他因素对机体的影响，或根据动物切除某腺体后出现的症状推断该腺体的功能。一个经典案例是向无甲状腺素的蝌蚪注射甲状腺素，能显著加速其向蛙的转变过程。
PART 4离体组织器官实验法
此方法涉及将动物的离体组织、器官或生物性致病因子（例如微生物、寄生虫）置于特定存活条件（包括适宜的温度、营养成分、氧气供应、水分及pH值）下进行观察。
例如，使用离体肠管来研究药物对其蠕动、吸收能力、通透性及血流状况的影响，并深入探究药物作用机制；或利用大肠杆菌等细菌进行药物敏感性测试，以发现抑制细菌生长的药物并探索其作用规律，为肠道感染防治提供科学依据。
离体实验的优势在于操作简便，对仪器设备要求不高，实验条件易于控制，且人力投入较少，常作为分析性研究的首选。然而，其局限性在于模拟的存活环境与生物体实际情况存在差异，实验结果可能与体内变化不完全一致，因此更适合作为整体研究的辅助和参考。
PART 5瘘管实验法
该方法通过无菌手术为动物创建各类人造瘘管，如胃肠道瘘管、膀胱瘘管、唾液腺瘘管、食道瘘管及胆囊瘘管等，用于收集内脏液体，是生理学消化研究的重要手段。此技术属于慢性动物实验范畴，通常先在无菌条件下构建实验模型（如瘘管），待动物康复后再进行研究。
该方法的优点在于实验对象处于较为自然且相对稳定的内外环境，所得结果更贴近生理实际。其缺点是实验准备周期长，包括模型制备、术后护理及动物康复等待时间，导致实验耗时较长，工作量增大，因此在应用上受到一定限制。
PART 6移植实验法
此方法涉及将动物的器官、组织或细胞进行相互移植。以骨髓移植为例，将小鼠A（供体）的骨髓注入小鼠B（受体）的血液中，可观察到脾结节化现象（脾造血），脾结节数量直接反映了造血干细胞的数量，从而可监测干细胞的变化。
根据供受体关系，可分为同种骨髓移植（不同小鼠间）、同系骨髓移植（同一品系小鼠间）及异种骨髓移植（如小鼠至大鼠）。移植实验法在实验研究中应用广泛，为探索器官功能、疾病机制及治疗策略提供了有力工具。
PART 7生物电与活性物质观测法
生物电观测法侧重于利用电生理记录仪捕捉并记录动物体内各类生物电信号，涵盖心电、肌电、脑电等，为理解生理功能及病理变化提供电生理基础。
而活性观察法则通过生物化学手段，精准测定动物组织中活跃的生物分子，如酶类、激素等，以揭示其生物活性与功能状态。